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博雅辑因完成7千万元Pre-B+轮融资 再发文公开构建CRISPR文库新方法

文章来源: 投资界       发布时间:2019-02-11

2月11日消息,博雅辑因(EdiGene)宣布完成Pre-B+轮约7000万人民币融资,松禾资本领投,并由公司A轮领投方IDG资本,Pre-B轮领投方礼来亚洲基金等现有投资者跟投。与此同时拥有丰富临床经验的李云博士加盟公司,任职临床研究部副总裁。


博雅辑因成立于2015年,目前总部设在北京,并在广州及美国剑桥拥有分公司,其创始人及首席科学顾问魏文胜是基因编辑技术领军人物。博雅辑因拥有自主知识产权的技术及生产开发平台,专注于基因组编辑技术。公司致力于使用基因组编辑技术为传统疗法难以治愈的疾病开发新的疗法,以及为新药研发提供更创新的方案;同时也使用创新的高通量基因组筛选技术,产生功能性生物大数据,为新药开发提速。


博雅辑因完成7千万元Pre-B+轮融资 再发文公开构建CRISPR文库新方法


“可以在本轮投资博雅辑因,令人兴奋,” 松禾资本创始合伙人罗飞说道,“我们非常高兴可以为博雅辑因提供支持,与博雅辑因优秀的科学家和经验丰富的管理团队一起加速突破性疗法的开发,用以满足未被满足的治疗需求。”


同时,拥有20余年创新药物临床研发经验的李云博士加入公司,负责治疗管线项目的临床研发。李云博士在肿瘤、血液病以及免疫相关疾病的临床研发方面耕耘20余年,拥有I期到III期临床试验经验。在加入博雅辑因之前,李云博士在国际大型CRO精鼎医药公司(Parexel)全球医药服务部担任医学总监十余年;并在在诺华中国分公司、罗氏中国、罗纳。普朗克。乐安公司(现属赛诺菲)、西安杨森等公司临床研发部门担任过多种职务。


“我们的研发管线正在进入令人激动的下一阶段,本轮新的融资将进一步验证及支持我们将自主研发的技术平台转化为病人受益的有效治疗手段的策略。”博雅辑因CEO魏东博士说道,“我们非常高兴李博士在这个关键时刻加入公司。她在血液及肿瘤疾病疗法方面的临床经验将会极大地推进我们的前沿项目,让这些新的疗法在近期内进入临床。”


笔者也注意到,在2018年底,《快公司FastCompany》中文版公布的2018年度“中国最佳创新公司50”榜单中,博雅辑因(EdiGene)凭借扎实的科研实力以及创新的技术转化应用平台荣登该榜。


《快公司fastcompany》是美国三大商业媒体之一。10年前,《快公司FastComapy》推出了第一个“全球最佳创新公司50”(Most Innovative Companies 50,简称MIC50,或Fast50)榜单。历经十年的坚持,它已经成为全球享誉盛名的榜单。秉承相同的做法、相同的思路,从2014年起,《快公司FastCompany》中文版每年在中国数千家公司中逐一筛选,寻找具有创新基因并将想法付诸实施的佼佼者。现在,MIC50榜单已经成为观察中国创新的风向标之一。


2018 MIC50榜单,同样经过了数月的筛、评选。以下是FastCompany对博雅辑因上榜理由的解读。


博雅辑因完成7千万元Pre-B+轮融资 再发文公开构建CRISPR文库新方法


回顾2018年,博雅辑因求真务实,收获了诸多的鼓励和认可。政府方面,博雅辑因获得了北京市科学技术奖、北京人社部北京市优秀创业项目一等奖、广东“众创杯”创新创业大赛企业组冠军等奖项,并入选北京市自然基金依托单位、北京市知识产权试点单位及昌平科技研发中心、中关村前沿储备项目等称号。媒体方面,博雅辑因亦入选了清科集团“中国最具投资价值企业50强”、i黑马《2018黑马TOP100》、动脉网2018未来医疗100强等榜单。面对2019,我们有理由期待博雅辑因更多的成长和突破。


此外,近日,博雅辑因(EdiGene)与北大魏文胜课题组在Genome Biology杂志联合在线发表了题为“Guide RNAs with embedded barcodes boost CRISPR-pooled screens”的研究论文,公开了一种构建CRISPR文库的新方法——iBar技术。该方法为在体内或原代细胞系等细胞数量有限的情况下进行高通量基因组研究提供了重要工具。


博雅辑因完成7千万元Pre-B+轮融资 再发文公开构建CRISPR文库新方法


CRISPR/Cas9系统作为强大的基因组编辑工具被广泛运用于基因的功能性筛选研究。而CRISPR高通量基因组筛选技术,则是一种使用CRISPR/Cas9将某个细胞群体改造成同时拥有许多种基因突变的细胞库,然后利用药物、细胞因子等不同的环境条件对这个细胞库中不同基因型的细胞进行筛选,高通量地对大量的基因进行功能研究。为保证筛选准确性,需要尽可能避免“搭车效应”。即避免一个细胞中因同时出现多种基因突变而互相干扰对其功能的研究。目前通行的办法,是要求在慢病毒侵染构建文库时保证较低的感染复数(MOI);同时为获得高度可重复性的结果,需要多组实验重复。这些要求使常规筛选工作量巨大;同时当细胞来源受限时(如原代细胞、体内研究等),难以实现大规模的功能性筛选研究。而本次公布的iBar技术则刚好可以解决以上问题。


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iBar技术通过重新设计的sgRNA被赋予多条分子条码(Internal Barcode,iBar,如图所示)。


这些内置分子条码能够多次、独立追踪sgRNA富集程度,结合重新适配的MAGeCKiBAR的生物信息学分析方法,成功避免了在高感染复数条件下的“搭车效应”,提高了数据可靠性。与常规筛选比较,iBAR方法提高了功能性筛选的敏感性,显著降低由于高感染复数建库筛选中产生的高假阳性和假阴性。


魏文胜课题组在率先在2014至2018年,先后实现了针对蛋白质编码基因和长链非编码RNA的高通量功能性筛选(Zhou et al. Nature 2014; Zhu et al. Nature Biotechnology 2016; Liu et al. Nature Biotechnology 2018)。而本次与博雅辑因联合发表的iBar技术,则首次实现了在高MOI条件下的高通量功能性筛选,显著降低了工作量,提高了筛选准确性,为在原代细胞或动物体内筛选提供了重要工具。


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